Diplomado en Técnicas Bioquímicas y Moleculares

Centro de Investigacion Científica de Yucatán, A.C

Diplomado

En Mérida

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Descripción

  • Tipología

    Diplomados

  • Nivel

    Nivel intermedio

  • Idiomas

    Castellano

  • Lugar

    Mérida

  • Horas lectivas

    160h

  • Duración

    4 Semanas

  • Inicio

    Fechas disponibles

El Diplomado está enfocado a la revisión y la ejecución de las técnicas experimentales
empleadas con mayor frecuencia en los laboratorios de investigación para el análisis, la
identificación y la caracterización de moléculas biológicas.
En el desarrollo del Diplomado, los participantes tendrán la oportunidad de conocer el
fundamento teórico de los desarrollos experimentales, decidir cuáles son las tecnologías
más aptas para su aplicación en la resolución de problemas biológicos, así como ejecutar
los protocolos avanzados que empleamos en los laboratorios de la UBBMP para aislar,
identificar y caracterizar moléculas biológicamente activas

Sedes y fechas disponibles

Ubicación

Inicio

Mérida (Yucatán)
Ver mapa
Calle 43 130 por 32 y 34 Colonia Chuburná de Hidalgo, 97205
Horario: 9:00 a 17:00 hrs

Inicio

Fechas disponiblesInscripciones abiertas
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Fechas disponiblesInscripciones abiertas
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Acerca de este curso

Ser Profesionistas o estudiantes de posgrado en las áreas de la biología, la bioquímica, la genética, la biología molecular y otras afines

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Materias

  • Desarrollos EXPERIMENTALES
  • Resolucion DE PROBLEMAS BIOLOGICOS
  • Biología molecular
  • Genética
  • Bioquímica
  • Investigación y desarrollo

Profesores

Dr. Enrique Martínez Hernández

Dr. Enrique Martínez Hernández

Instructor

DR. JAIRO CRISTÓBAL ALEJO

DR. JAIRO CRISTÓBAL ALEJO

PROFESOR INVESTIGADOR DE TC

Doctor en Fitopatología Colegio de Postgraduados y es investigador Nacional nivel 1, ha impartido cursos a nivel licenciatura y posgrado. Integrante del cuerpo académico en formación-producción y protección de cultivos hortícolas tropicales, Producción sustentable de hortalizas tropicales. Es especialista en el diagnóstico, control y epidemiología de enfermedades en hortalizas y ornamentales tropicales así como en su producción. También realiza evaluaciones de extractos orgánicos y organismos antagonistas contra fitopatógenos con origen en el suelo. Ha dirigido 25 tesis de licenciatura.

Programa académico

MODULO 1: Técnicas Bioquímicas

1. Modelos para estudios bioquímicos.

1.1 Planta, órgano, tejido, célula, organelo.

1.2 Modelos in vitro

2. Observación directa.

2.1 Microscopía óptica.

2.2 Microscopía electrónica.

2.3 Microscopía confocal.

3. Métodos generales de laboratorio.

3.1 Medición de pH y conductividad.

3.2 Radiactividad.

3.3 Marcaje no radiactivo.

3.4 Autoradiografía.

3.5 Filtración con membranas y diálisis.

4. Separación e identificación de células, organelos y moléculas.

4.1 Cromatografía.

4.2 Electroforesis.

4.3 Centrifugación.

4.4 Métodos inmunológicos.

4.5 Citometría.

5. Métodos espectroscópicos.

5.1 De absorción.

5.2 De fluorescencia.

5.3 Dispersión óptica y dicroísmo circular.

5.4 Resonancia magnética nuclear.

5.5 Masas.

6. Medición de la actividad enzimática.

6.1 Concepto de enzima.

6.2 Métodos utilizados para medir actividad enzimática.

MODULO 2: Técnicas de Biología Molecular

1. Aislamiento de ácidos nucleicos de tejidos vegetales.

1.1 Métodos para el aislamiento de ADN, ARN total y poliadenilado

1.2 Métodos para determinar la concentración, integridad y pureza de los ácidos nucleicos.

2. Tecnologías del ADN recombinante.

2.1 Clonación génica, plásmidos, enzimas de restricción, células competentes, selección de clonas recombinantes por alfa complementación, aislamiento de ADN plasmídico.

3. Métodos para medir la expresión génica.

3.1 Síntesis de bibliotecas de ADNc. Bibliotecas plasmídicas, bibliotecas fágicas, clonación por recombinación.

3.2 Métodos basados en hibridación directa. Southern y northern blot, métodos basados en la PCR, métodos combinados.

4. La reacción en cadena de la polimerasa (PCR).

4.1 Fundamentos de la PCR. Enzimas termoestables, diseño de oligonucleótidos cebadores, detección de secuencias específicas, clonación de secuencias completas.

4.2 PCR de punto final. Hot start PCR, clonación TA, clonación por topoisomerasas.

4.3 PCR en tiempo real. Formatos del PCR, métodos de cuantificación de productos, caracterización de productos por las curvas de fusión, uso de SYBR green, sondas TaqMan.

5. Transformación genética.

5.1 Métodos físicos y biológicos. Biobalística, fusión de protoplastos, microinyección, cocultivo con

Agrobacterium tumefaciens y A. rhizogenes.

5.2 Vectores binarios. Promotores constitutivos e inducibles, genes reporteros y de selección.

6. Métodos para medir la interacción molecular.

6.1 Determinación de la interacción de proteínas con el ADN.

6.2 Inmunoprecipitación y coinmunoprecipitación.

6.3 Determinación de la interacción proteína-proteína

Información adicional

Es un Diplomado único en la region y que aprovecha los 35 años de experiencia de sus investigadores que tiene el Centro de Investigacion Científica.

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